Abstract
sfondo
L'obiettivo di questo studio era di determinare se l'aggiunta di particelle MICROSILVER o nanosilver a un ortodontico Primer colpisce resistenza al taglio legame (SBS) e la staffa /rottura adesiva
Metodi
incisivi bovino sono stati divisi casualmente in sei gruppi con 16 esemplari in ciascuna:. nel gruppo 1 (controllo), le staffe sono state incollate con Transbond ™ XT Primer . Nei gruppi sperimentali, MICROSILVER (gruppi 2 e 3) e nanosilver (gruppi 4-6) particelle di dimensioni diverse sono stati aggiunti Transbond XT primer e fotopolimerizzato per 15 secondi [gruppo 2: 0.1% (w /w) dimensioni MICROSILVER particelle 3,5-18 micron; Gruppo 3: 0,3% (w /w) dimensione delle particelle MICROSILVER 3,5-18 micron; Gruppo 4: 0,11% (w /w) dimensione delle particelle nanosilver 12,6-18,5 nm; Gruppo 5: 0,18% (w /w) dimensione delle particelle nanosilver 12,6-18,5 nm; Gruppo 6: 0,33% (w /w) granulometria nanosilver 12,6-18,5 nm]. Da allora in poi, tra parentesi sono stati legati da fotopolimerizzazione l'adesivo per 20 secondi. Dopo 24 ore di conservazione in acqua distillata a 37 ° C, SBS è stata misurata con una macchina di prova zwicki 1120. L'indice residuo adesivo e la prevalenza di macchie d'argento sulla superficie del campione sono stati determinati in 10 × ingrandimento. . Analisi statistica a due vie della varianza è stata eseguita per confrontare SBS, e un test chi-quadrato è stato utilizzato per confrontare i punteggi Ari e la prevalenza di macchie d'argento
Risultati
differenze significative nella SBS (controllo: 16.59 ± 6.82 MPa; gruppo 2: 20,6 ± 4.19 MPa; gruppo 3: 16.98 ± 4.84 MPa; gruppo 4: 17.15 ± 5.92 MPa; gruppo 5: 20.09 ± 3.35 MPa; gruppo 6: 16.44 ± 4.51 MPa; p
& gt; 0,665) e punteggi Ari (p = 0,901) sono state riscontrate differenze tra il gruppo di controllo e di qualsiasi gruppo sperimentale. Solo i gruppi sperimentali con particelle nanosilver rivelato macchie statisticamente più d'argento su l'adesivo residuo.
Conclusioni
aggiunta di piccole concentrazioni di particelle MICROSILVER o nanosilver non influisca né SBS né ARI punteggi. L'aggiunta di particelle nanoargento risultati in macchie d'argento nel fondo rimanente visibile sotto 10 × ingrandimento. Ulteriori studi sono necessari per indagare gli anti-carie prestazioni potenziale e clinica di convenzionale fondo ortodontico con particelle nanosilver o MICROSILVER incorporati.
Parole
Shear forza di legame Microsilver Nanosilver antimicrobica Sfondo
demineralizzazione seguita dalla formazione di macchia bianca è un complicazione nella terapia ortodontica ben noto quando apparecchi fissi sono utilizzati [1-5]. Il rischio di lesioni macchia bianca è molto meno in ortodonzia linguale [6], ma è ancora presente [7]. E 'causata da un aumento del numero di Streptococcus mutans
e altri microbi patologici nel biofilm, diminuzione del pH e compromessa igiene orale [3]. Le misure preventive che tentano di ridurre la demineralizzazione dovrebbero essere indipendenti compliance del paziente. Queste misure comprendono leganti antimicrobici, collutori che trasportano agenti antimicrobici, rivestimenti su staffe /fili o agenti adiacenti per apparecchi ortodontici rimineralizzante [5,7].
Lim et al. [8] hanno notato che più batteri sono stati rilevati sull'adesivo che sul materiale staffa stessa. Questo fatto ha incoraggiato lo sviluppo di adesivi antibatterici innovativi progettati per ridurre la colonizzazione batterica. I recenti sviluppi in adesivi hanno incluso l'inserimento di vetri bioattivi in resina auto-misto [9,10] o sigillanti [11] o di altri additivi speciali nel collante [5,12-15]. Purtroppo, l'effetto antimicrobico di queste aggiunte può persistere per solo poche settimane [12,16] e può comportare elevati tassi di insuccesso adesivi [14,16-18]. Altre indagini hanno trattato con ossido di titanio su superfici staffa [19] o l'applicazione di nanoparticelle come il titanio, ossido di titanio, di zinco, ossido di zinco, oro, argento o ioni argento [5,20-22]. Questi e altri metodi sperimentali sono stati recentemente recensito da Borzabadi-Farahani et al. [17].
Tuttavia, tutti i nuovi approcci di incollaggio devono soddisfare il requisito di forza di adesione accettabili, che oscilla tra 5,9 e 7,8 MPa [23].
Argento è noto da tempo come agente antimicrobico [24] con effetti antimicrobici superiori a quelli di oro o zinco [25]. nanoparticelle d'argento sono inferiori a 100 nm in dimensioni e interagiscono più strettamente con microbi. Essi forniscono una superficie più ampia per l'attività antimicrobica a causa di una maggiore rapporto superficie-volume rispetto a particelle più grandi [19,26]. In ortodonzia due meccanismi vengono applicati per la riduzione dei batteri: a) che combina materiali dentali con nanoparticelle; e b) le superfici di rivestimento con nanoparticelle per impedire l'adesione batterica [17].
Purtroppo, la performance clinica di materiali argento-caricato per la carie potenzialmente arresto in odontoiatria restaurativa è sempre stata limitata da scolorimento ed estetica ridotto [27,28]. trattamento ricostituente della carie nei bambini con Ketac-argento, un cemento vetroionomero contenente 45-55% di particelle d'argento [29], ha provocato 8,4% con profonda decolorazione marginale entro un periodo di 3 anni [27]. Hosoya et al. [28] hanno riportato che il trattamento con argento diammina fluoruro ha provocato lo sbiadimento nero della carie-infettati smalto e dentina primaria.
Pertanto, l'obiettivo di questo in vitro
studio era di valutare caratteristiche quali resistenza al taglio (SBS) , staffa /fallimento adesivo e prestazioni estetiche di Transbond XT ™ fondo dopo l'incorporazione di diverse dimensioni delle particelle MICROSILVER o nanosilver.
Metodi
Materiali
bovino incisivi inferiori sono stati acquistati da Rocholl GmbH (Aglasterhausen, Germania), e sono stati controllati per crepe e /o la carie. Palavit G® è stato acquistato da Heraeus Kulzer GmbH (Wehrheim, Germania), cloramina-T da Sigma Aldrich Chimica GmbH (Taufkirchen, Germania) e acqua di B. Braun Melsungen AG (Melsungen, Germania). Microsilver ™ BG-Med (dimensione delle particelle 3,5-18 micron) è stato acquistato da Bio Porta AG (Norimberga, Germania), nanosilver AgPure ™ W50 (granulometria 12,6-18,5 nm) è stata donata da ras materiali GmbH (Regensburg, Germania), scoperta ® staffe # 790-152-00 per dente 35 sono stati donati da Dentaurum GmbH (Ispringen, Germania), Transbond ™ XT primer e adesivo sono stati acquistati da 3 M Unitek ortodontici Prodotti (Monrovia, CA, USA), gel mordenzante Ormco® è stato acquistato da Ormco (Orange, CA, USA) e Zircate® Prophy Paste è stato acquistato da Dentsply DeTrey GmbH (Costanza, Germania). Tutti i prodotti chimici sono stati conservati secondo le istruzioni del produttore.
Tutti i materiali sono elencati nella tabella 1.Table 1 I materiali utilizzati in questo studio
Materiale
Produttore
bovina mandibolare incisivi
Rocholl GmbH; Aglasterhausen; Germania
Palavit G®
Heraeus Kulzer GmbH; Werheim; Germania
Microsilver ™ BG-Med (dimensione delle particelle 3,5-18 micron)
Bio Porta AG; Norimberga; Germania
Nanosilver AgPure ™ W50 (granulometria 12,6-18,5 nm)
ras materiali GmbH; Ratisbona; staffe Germania
Discovery® # 790-152-00 per dente 35
Dentaurum GmbH & amp; Co. KG; Ispringen; Germania
Transbond ™ XT primer e adesivo
3 M Unitek ortodontici prodotti; Monrovia; CA; USA
Ormco® etching gel
Ormco Corporation; Arancia; CA; USA
Zircate® Prophy Paste
Dentsply DeTrey GmbH; Costanza; Germania
cloramina T idrato
Sigma Aldrich Chimica GmbH; Taufkirchen /Monaco di Baviera; Germania
Aqua
B. Braun Melsungen AG; Melsungen; Germania
campioni e la preparazione delle soluzioni madre di MICROSILVER e nanosilver
bovina incisivi inferiori sono stati incorporati in Palavit G® resina indurita chimicamente. La superficie labiale stato posizionato rivolto verso l'alto e parallela alla resina. I denti sono stati conservati in soluzione cloramina T 0,5%.
D'uso medico di MICROSILVER particelle una gamma di 0,1-0,5% w /w è consigliato dal produttore [30]. Secondo le raccomandazioni del costruttore, 500 ppm (0.05% di particelle assoluto o 0,11% peso /peso [w /w]) particelle nanosilver devono essere utilizzati per una significativa inibizione batterica per i rivestimenti, 800 ppm (0,08% di particelle assoluti o 0,18% w /w ) sui dispositivi medici e 1500 ppm (0,15% di particelle assoluti o 0,33% w /w) per una forte riduzione batterica sui dispositivi medici [31]. Pertanto, l'aggiunta di nanoparticelle d'argento per Transbond ™ XT fondo in questo studio si basa su queste raccomandazioni.
Per confrontare in vitro
svolgimento delle particelle MICROSILVER e nanosilver, le stesse concentrazioni w /w sono stati scelti all'interno della raccomandata concentrazione gamma.
soluzioni fotografici di 10% (w /w) MICROSILVER e l'11% (w /w) nanoargento in acqua sono stati preparati. Prima della procedura di incollaggio, le soluzioni madre sono stati diluiti in Transbond ™ XT primer e miscelato per preparare le soluzioni di lavoro. Le soluzioni sono stati diluiti nel modo seguente:
0,1% (w /w) soluzione MICROSILVER: diluizione 1: 100 (1 ml MICROSILVER 10% [w /w] soluzione di riserva e 99 ml di primer)
0,3% (w /w) soluzione MICROSILVER: 3: 100 diluizione (3 ml MICROSILVER 10% [w /w] soluzione e 97 ml di primer)
0,11% (w /w) soluzione nanosilver: diluizione 1: 100 (1 ml nanosilver 11% [w /w] soluzione di riserva e 99 ml di primer)
0,18% (w /w) soluzione nanosilver: 1.8: 100 diluizione (1,8 ml nanosilver 11% [w /w] soluzione di riserva e 98,2 ml di primer)
0,33% (w /w) soluzione nanosilver: 3: 100 diluizione (3 ml nanosilver 11% [w /w] soluzione di riserva e 97 ml di primer)
Per SBS testare i denti sono stati divisi casualmente in sei gruppi di 16 campioni ciascuno: gruppo 1: Primer, gruppo di controllo
gruppi sperimentali 2-6 Gruppo 2: Primer con il 0,1% (w /w) MICROSILVER (granulometria 3,5-18 micron)
Gruppo 3: Primer con il 0,3% (w /w) formato MICROSILVER (particelle 3.5 -18 micron)
Gruppo 4: Primer con il 0,11% (w /w) nanosilver (granulometria 12,6-18,5 nm)
Gruppo 5: Primer con il 0,18% (w /w) nanosilver (granulometria 12,6-18,5 nm)
Gruppo 6: Primer con il 0,33% (w /w) nanosilver (granulometria 12,6-18,5 nm)
procedura Bonding
gruppo 1 (fondo, gruppo di controllo): I denti sono stati lucidati con Zircate® Prophy Paste, risciacquati con acqua e aria secca. Le superfici di smalto sono stati poi incisi per 30 secondi con un gel mordenzante acido fosforico 37%, quindi risciacquati per 10 secondi con acqua ed essiccato all'aria. Una sottile pellicola di primer è stato applicato sulla superficie dello smalto inciso e illuminato con una sorgente di luce (Poly Lux II, KaVo Dental, Biberach /Riss, Germania) per 15 secondi. Gruppi Poi, Transbond XT adesivo è stato applicato alla base staffa, la staffa è stato applicato e premuto sulla superficie dello smalto e l'adesivo eccessivo è stato rimosso prima della polimerizzazione, che è stato condotto per 20 secondi ciascuno, dal lato mesiale e distale lati.
2 a 6 (primer MICROSILVER o nanosilver, gruppi sperimentali): la procedura è la stessa come nel gruppo 1, ma invece di primer puro, 0.1% (w /w) o 0,3% (w /w) della miscela MICROSILVER primer o 0.11 % (w /w), 0,18% (w /w) o 0,33% (w /w) di miscela di nanosilver Primer sono stati utilizzati. La miscela di primer è stata accuratamente miscelata con un pennello e quindi applicata ad ogni dente.
La procedura di legame è stata eseguita da uno sperimentatore (SB) secondo le istruzioni del produttore. Tutti i denti sono stati incollati con Discovery® staffe premolare inferiore con una base di laser-strutturata; queste parentesi sono spesso utilizzati come riferimento secondo la norma DIN 13990 [32]. La superficie media della staffa incollato era 13,42 mm 2.
Una fotografia rappresentante (Canon EOS650D fotocamera) di un dente incollato nella macchina di prova è mostrato in Figura 1. Figura 1 fotografie rappresentativi di un dente posizionato in la macchina di prova. A: vista laterale; vista laterale B.
al taglio resistenza misura
Resistenza al taglio di legame è stata misurata dopo 24 ore di conservazione in acqua distillata a 37 ° C con una macchina di prova zwicki 1120 (Zwick Roell, Ulm, Germania). Una forza è applicata alla base staffa alle ali in una direzione occlusogingival con una velocità della testa a croce di 1 mm /min. La forza è stata misurata in Newton (N). I valori SBS sono stati calcolati convertendo Newton in megapascal (MPa)
. La valutazione di adesivo residuo
La quantità di colla residua aderente alla superficie dello smalto è stata quantificata utilizzando l'indice residuo adesivo (ARI) sviluppato da Årtun e Bergland [ ,,,0],33]. I punteggi ARI di tutti i campioni sono stati registrati due volte dallo stesso ricercatore utilizzando un stereomicroscopio ottico (Leica Z 6 APO, Leica Microsystems, Wetzlar, Germania) sotto 10 × ingrandimento. gruppi di punteggio sono: 0, nessun adesivo rimane sul dente; 1, meno del 50% del collante rimane sul dente; 2, più del 50% del collante rimane sul dente; 3, tutto adesivo rimane sul dente. Compra di microscopio elettronico a scansione (SEM) analisi dei resti di adesivo i campioni sono stati atomizzate con l'oro /platino in un farfugliare coater Edwards S150 B (Monaco, Germania) e analizzati immagine SEM da ( Phenom FEI G1 e Phenom Software Prosuite, Eindhoven, Paesi Bassi)
. La valutazione di macchie d'argento dopo debonding
dopo debonding, le superfici dei denti sono stati ispezionati da occhi e sotto i 10 × ingrandimenti con un stereomicroscopio ottico per scolorimento [28, 29].
analisi statistica
analisi statistica è stata effettuata utilizzando SPSS 21.0.0 software (SPSS Inc., Chicago, iL).
per il calcolo dimensione del campione per le misurazioni SBS, una analisi della potenza per SS-errore (potere & gt; 80).. è stata eseguita
I dati SSI sono stati analizzati utilizzando il test di Kolmogorov-Smirnov, seguita da analisi della varianza (ANOVA) e un analisi di sopravvivenza di Kaplan-Meier
I dati ARI sono stati analizzati utilizzando il test di Kolmogorov-Smirnov, seguito dal test chi-quadrato. Analisi posto argento è stata effettuata utilizzando il test di Kolmogorov-Smirnov, seguita dal test del chi-quadro. Inoltre i test chi-quadrato sono stati usati per analizzare le differenze tra gruppi. P
valori inferiori a 0,05 sono stati considerati statisticamente significativi.
Risultati
dimensione del campione calcolo
La potenza di questi 16 campioni era 0,818. . Per questo potere era necessario un minimo di 15 campioni per gruppo
misura Resistenza al taglio
valori SBS sono stati i seguenti: Gruppo 1 (controllo): 16,59 ± 6,82 MPa; gruppo 2 (Primer + 0,1% MICROSILVER): 20,6 ± 4.19 MPa; gruppo 3 (Primer + 0,3% MICROSILVER): 16.98 ± 4.84 MPa; gruppo 4 (Primer + 0,11% nanosilver): 17,15 ± 5,92 MPa; gruppo 5 (Primer + 0,18% nanosilver): 20.09 ± 3.35 MPa; gruppo 6 (Primer + 0,33% nanosilver):. 16.44 ± 4.51 MPa
Il test di Kolmogorov-Smirnov per SBS ha mostrato distribuzione normale in tutti i gruppi sperimentali (statistica = 0.045, df = 96, quadratico medio = 2.941, F = 0.905, p = 0,200
). Pertanto, ANOVA è stato applicato. ANOVA a due vie ha mostrato alcuna differenza statisticamente significativa per SBS tra i gruppi sperimentali e il gruppo di controllo (p
& gt; 0,665). In generale, differenze significative possono essere rilevate tra i gruppi come anche per 2-by-2-confronti di tutti i gruppi. La figura 2 mostra i risultati delle analisi di sopravvivenza di Kaplan-Maier. statistiche descrittive ei risultati del test ANOVA sono presentati nella Tabella 2. Figura 2 Kaplan-Meier analisi di sopravvivenza per tutti i gruppi sperimentali.
Tabella 2 Statistiche descrittive dei gruppi e confronto dei valori di SBS (ANOVA)
Gruppi
n
Media (SD) [MPa]
Gamma [ ,,,0],MPa]
95% CI [MPa]
mediana [MPa]
95% CI [MPa]
TB
16
16.59 (6.82)
7,03-31,38 13,25-19,94
15.76
12,55-18,97
TB + 0,1% (w /w) μAg
16
20,6 (4.19)
14,86-30,49
18.55- 22.66
20.00
17,45-22,55
TB + 0,3% (w /w) μAg
16
16.98 (4,84)
6,9-25,78
14,61-19,35
17.55
14,14-20,96
TB + 0,11% (w /w) Nag
16
17.15 (5.92)
11,02-30,18 14,25-20,05
14.34
9,15-19,53
TB + 0,18% (w /w) Nag
16
20.09 (3.35)
14.05 -25,28
18,45-21,74
19.99
17,66-22,32
TB + 0,33% (w /w) Nag
16
16.44 (4.51)
10,55-25,74 14,23-18,65
15.34
8,48-22,20
ANOVA:. Somma dei quadrati = 273,5, df = 93, quadratico medio = 2.941, F
-value = 0.905, p = 0,665
-value
Valutazione della colla residua
Tabella 3 presenta i punteggi ARI. La determinazione di 2 volte dei punteggi ARI in due giorni diversi non ha evidenziato differenze a tutti, e la formula di Dahlberg applicata generato un errore di [34] .table 3 adesivo indice residuo zero (ARI)
punteggio ARI
differenze tra i gruppi
Gruppi
0
1
2
3
mediana
TB
0
7
6
3
2
Un
TB + 0,1% (w /w) μAg
0
9
4
3
1
Un
TB + 0,3% (w /w) μAg
0
8
Pagina 6
2
1
Un
TB + 0,11% (w /w) Nag
0
6
6
4
2
Un
TB + 0,18% ( w /w) Nag
0
7
4
5
2
A
TB + 0,33% (w /w) Nag
0
7
5
4
2
Un
ARI punteggi 0, nessun adesivo rimane sul dente; 1, meno del 50% di adesivo rimane sul dente; 2, più del 50% di adesivo rimane sul dente; 3, tutto adesivo rimane sul dente.
Tutti i gruppi che non sono significativamente diversi tra loro sono mostrati con le stesse lettere (test chi-quadrato = 1.599, df = 5, p = 0,901)
.
non ci sono stati casi di un punteggio ARI di 0 rappresenta nessun adesivo sul dente. Il punteggio medio ARI per il controllo e tutti i gruppi sperimentali con nanoparticelle d'argento è stata del 2, mentre i gruppi sperimentali con particelle MICROSILVER rivelato una media di 1. Il test di Kolmogorov-Smirnov ha mostrato distribuzione normale per i punteggi ARI (Statistica = 0,290, df = 96 , p = 0,772
). Il test del chi-quadrato tra tutti i gruppi esaminati ha mostrato alcuna differenza statistica (p = 0,901)
. La valutazione di scolorimento dopo debonding
ad occhio Controllo visivo senza macchie d'argento erano visibili su ogni dente. Under 10 sono stati rilevati × ingrandimento stereomicroscopio macchie piccola d'argento sul fondo di riposo /adesivo sulla superficie del dente in tutti i gruppi sperimentali (Tabella 4, figura 3) .table 4 Numero di esemplari che rivelano macchie d'argento rilevate nell'ambito 10 × ingrandimento
gruppi
Numero di esemplari
differenza Gruppo
TB
0
Un
TB + 0,1% (w /w) μAg
2
Un
TB + 0,3% (w /w) μAg
1
A
TB + 0,11% (w /w) Nag
4
B
TB + 0,18% (w /w) Nag
6
B
TB + 0,33% (w /w) Nag
9
B
gruppi con le stesse lettere non sono statistiche diverse (chi quadrato lettera test A: chi-quadrato = 2.089, df = 2, p = 0,352
; chi-quadro lettera di prova B: chi-quadro = 3.241, df = 2, p = 0,198
). Test chi-quadro su tutti i gruppi mostra una differenza statisticamente significativa (chi-quadrato = 20,074, df = 5, p
= 0.01).
figura 3 microscopica rappresentante e immagini SEM di punteggi mediani ARI. A-F: 10 × ingrandimenti; Frecce marchio rilevate macchie d'argento. controparti a-f SEM (45 ×) dello stesso campione. A e un primer (Transbond XT); B e b, primer e 0,1% (w /w) MICROSILVER; C ec primer e 0,3% (w /w) MICROSILVER; D e D, primer e 0,11% (w /w) nanosilver; E ed e, primer e 0,18% (w /w) nanosilver; F e F, primer e 0,33% (w /w) nanosilver.
Il test di Kolmogorov-Smirnov non hanno mostrato alcuna distribuzione normale per i punti d'argento (Statistica = 0,142, df = 96, p = 0.000
). Il test del chi-quadrato tra tutti i gruppi esaminati ha mostrato una differenza statisticamente significativa (chi-quadrato = 20,074, df = 5, p = 0,01
), rivelando significativamente più denti con macchie d'argento nei gruppi sperimentali con nanoparticelle d'argento applicati rispetto con il controllo o gruppi sperimentali con particelle MICROSILVER incorporate. Il test del chi-quadrato tra di primer, primer e 0,1% (w /w) MICROSILVER e primer e 0,3% (w /w) MICROSILVER ha mostrato differenze statisticamente significative (p = 0,352
). Il test del chi-quadrato tra primer e 0,11% (w /w) nanosilver, primer e 0,18% (w /w) nanosilver e primer e 0,33% (w /w) nanosilver era statisticamente significativamente diverso per il controllo ei gruppi sperimentali con particelle aggiunto Microsilver (p = 0,001)
.
Discussione
sulla base dei nostri risultati in vitro
, né SBS né punteggi ARI sono state influenzate significativamente con l'aggiunta di MICROSILVER o nanoargento particelle di diverse dimensioni. Ahn et al. [20] aggiunti 250 ppm e 500 ppm di nanoparticelle di argento con una dimensione inferiore a 5 nm in combinazione con particelle di silice nanometriche agli adesivi compositi sperimentali autonomi mista. Essi hanno scoperto che i valori misurati su SBS premolari umani non hanno mostrato differenze significative tra gli adesivi compositi sperimentali e adesivi convenzionali. Anche se abbiamo aggiunto nanoparticelle d'argento più ampiamente e in concentrazioni maggiori rispetto Ahn et al. [20], abbiamo scoperto che i nostri risultati SBS erano comparabili con loro [20]. Seguendo la nostra procedura sperimentale, Akhavan et al. [21] ha aggiunto nanoparticelle d'argento a Transbond ™ XT fondo; tuttavia, hanno usato concentrazioni più elevate (1%, 5% e 10%) di nanoparticelle di argento e aggiunto 5% idrossiapatite alle miscele. Inoltre, hanno misurato SBS su premolari umani con una velocità traversa di 0,5 mm /min rendendo impossibile per confrontare i loro valori SBS con nostro [35]. Sadat-Shojai et al. [36] ha descritto l'influenza sulla forza di legame di nanoparticelle incorporati nei materiali dentina incollaggio. SBS aumentata con l'incorporazione di 0,2% nanoparticelle di idrossiapatite e successivamente diminuisce a concentrazioni più elevate [36]. Gli autori hanno discusso se le concentrazioni più elevate di nanoparticelle avrebbero aggregare e quindi interagire con il nanomateriale, che potrebbe ancora portare a difetti nella matrice. Secondo Sadat-Shojai et al. [36] e Ahn et al. [20], le concentrazioni di particelle nanosilver fino al 0,33% (w /w) non interferiscono con la matrice del primer o l'adesivo. La concentrazione utilizzata da Akhavan et al. [21] potrebbe essere in un intervallo che potrebbe influenzare la matrice.
I punteggi ARI registrati variava tra 1 e 3 nei diversi gruppi e non differiva in modo significativo tra il controllo e gruppi sperimentali. Né l'incorporazione di particelle MICROSILVER né particelle nanosilver colpito la staffa /rottura adesiva. O'Brien et al. [37] hanno trovato che la valutazione del punteggio ARI è molto soggettiva. Pertanto, i punteggi ARI sono stati misurati due volte. Non abbiamo trovato differenze in queste due determinazioni.
Molti studi hanno indagato le particelle nanosilver e dei loro effetti potenziali sulla batteri o cellule animali [24,38-43]. Nel nostro vitro
studio non abbiamo indagare il rilascio di nanoargento in saliva, ma deve essere considerato questi studi. L'argento microparticelle in esame non è citotossico ed è certificato per applicazioni medicali (ISO 10993-5) [44,45]. Bürgers et al. [46] in uno studio in vitro
applicata MICROSILVER alla resina composita X-Flow (Dentsply De Trey). Hanno trovato effetti anti-aderenti e antimicrobici significativi sulla superficie del composito [46].
Argento o composti sono stati ripetutamente aggiunto ai materiali da restauro in odontoiatria restaurativa [27,28,47]. Sfortunatamente, l'uso di questi materiali provocato restauri e /o denti [28,29,47] scolorite. Kawasaki et al. [47] hanno confrontato l'effetto protettivo della diammina fluoruro di argento con Esafluorosilicato ammonio sulla demineralizzazione della dentina. Diamine fluoruro di argento ha prodotto una profondità demineralizzata meno profondo, ma è macchiato i denti neri a causa di sulfonization. Investigating la posizione delle due soluzioni, hanno scoperto che l'argento del fluoruro di argento diammina coperto la superficie del minerale ed il silicio del Esafluorosilicato ammonio era situato nella lesione minerale [47]. Nel nostro studio, visibile scolorimento argento non è stata rilevata dopo debonding. Tuttavia, utilizzando 10 × ingrandimenti, abbiamo trovato i denti con macchie d'argento leggermente sparsi in materia di residui di primer /adesivo. L'aggiunta di microparticelle d'argento (dimensioni delle particelle 3,5-18 micron) al fondo portato a una leggera comparsa di macchie d'argento senza alcun effetto statisticamente rilevante. Il numero di denti con macchie d'argento è aumentato significativamente con l'aggiunta di nanoparticelle di argento (granulometria 12,6-18,5 nm). Cheng et al. [48] ha aggiunto nanoparticelle di ammonio quaternario e argento per l'innesco di Scotchbond Multi-Purpose. Si noti che questo iniettore aveva estetica /colore simile a quelle del controllo [48]. Questi autori hanno concluso che l'area superficiale delle nanoparticelle di argento disponibile un potente effetto a un livello di riempimento basso per evitare un'influenza negativa sulle proprietà meccaniche e colore. In un secondo studio, Cheng et al. [49] ha aggiunto nanoparticelle d'argento (granulometria 2,7 nm) a amorfa calcio resina contenente fosfato. Essi hanno scoperto che l'aggiunta di 0,042% nanoparticelle d'argento impartita alcuna influenza sul colore o resistenza alla flessione. Concentrazioni più elevate di 0,175% rivelato un colore brunastro e un calo di forza. Pertanto, si raccomanda l'aggiunta di solo una bassa concentrazione di nanoparticelle di argento. Besinis et al. [50] recentemente applicato una soluzione di argento nanoparticelle (dimensione delle particelle 56,8 ± 18,6 nm) e una soluzione di nitrato d'argento (granulometria 52,8 ± 18,6 nm) ai dischi dentina umani. Entrambe le soluzioni esposte un effetto antibatterico [50], ma solo la soluzione di argento nanoparticelle raggiunto una corrispondenza colore clinicamente accettabile, mentre la soluzione di nitrato d'argento ha prodotto risultati esteticamente accettabili [50]. Sono necessari ulteriori studi per verificare se i punti osservati in questo studio in vitro
possono essere rimossi con la pulizia dopo il debonding. Se così, l'incorporazione di particelle di argento potrebbe essere un'opportunità per ridurre la colonizzazione batterica durante la terapia ortodontica.
Abbiamo usato incisivi bovina per questo vitro
studio, a causa della difficoltà di ottenere intatte denti umani di qualità e quantità sufficienti . Questo utilizzo è accettabile per gli studi di legame invece di denti umani secondo la norma DIN 13990 [32], e questi denti sono spesso usati in studi [51]. Ci sono analogie tra bovini e smalto umano in orientamento dei cristalliti, le dimensioni dei prismi esterni, e la composizione dello smalto proteina di matrice [52]. Tutti gli autori hanno letto e approvato il manoscritto finale.
