orale
Abstract
sfondo
Lo scopo di questo studio in vitro in stato quello di indagare il potenziale di rimozione biofilm nelle regioni dentali interprossimali con pulizia intervallare con un irrigatore orale o uno spazzolino da denti sonico.
Metodi
biofilm tre specie (Streptococcus mutans
(OMZ 918), oralis Streptococcus
SK 248 (OMZ 60), actinomyces naeslundii
(OMZ 745)) sono state coltivate su dischi di idrossiapatite per 3 giorni in terreni di coltura. Ogni 24 h, i campioni sono stati incubati per 15 min in soluzione resazurin (cioè, terreno di coltura e il 10% v /v alamarBlue®) per misurare l'attività metabolica con uno spettrofotometro a fluorescenza in unità di fluorescenza relativa (RFU) al basale. Poi, i campioni sono stati fissati in possesso di dispositivi interprossimali e sono stati sottoposti a trattamento con un irrigatore orale (WF; Waterpik® Sensonic WP-100E), uno spazzolino da denti sonico attiva (WPA), o uno spazzolino da denti sonico inattiva (WPI; Waterpik® Sensonic SR-3000E) per 10 s (n = 18
/gruppo). biofilm non trattati serviti come controlli (CO). Dopo il trattamento, l'attività batterica è stato ri-misurata, e gli esemplari sono stati ri-coltivato in terreno fresco per 24 ore fino al prossimo procedura di pulizia. Complessivamente, la pulizia è stata ripetuta a intervalli di tre giorni di trattamento (d1, d2, d3). Dopo D3, sono state scattate le immagini SEM (n =
8) e CFU è stata misurata (n
= 3). attività metabolica è stata analizzata per ogni disco a parte, i valori RFU sono stati in media per d1 per confrontare stabilità iniziale biofilm, e rapporti di valori di base e post-trattamento sono stati confrontati. I risultati sono stati analizzati con ANOVA con il test post-hoc Scheffé, o Kruskal-Wallis con il post-hoc test di Mann-Whitney.
Risultati
mediano basale RFU-valori di d1 portato a 7.821,8 RFU (range interquartile = 5114,5) . Massima riduzione dell'attività metabolica è stato registrato in modo significativo per l'irrigatore orale usato per 10 s (attività residua al giorno d1: WF 17,9%, WPA 58,8%, WPi 82,5%, CO 89,6%; D2: WF 36,8%, WPA 85,2%, WPi 82,5%, 90,0% di CO; d3:. WF 17,2%, WPA 79,6%, 96,3% WPi, CO 116,3%). immagini SEM di campioni non trattati (CO) e campioni trattati con lo spazzolino da denti sonico (WPA e WPI) hanno mostrato enormi quantità di biofilm, mentre i campioni irrigatore trattati per via orale (WF) ha rivelato a malapena eventuali batteri. dati CFU confermate le graduazioni tra i gruppi.
Conclusioni
secco delle regioni interprossimali realizzato meglio successo con un irrigatore orale rispetto all'uso di uno spazzolino da denti sonico. (350/350 parole)
Parole
alamarBlue rimozione saggio intervallare biofilm Interprossimale biofilm sistema di irrigazione orale di Sonic spazzolino elettronico materiale supplementare
La versione online di questo articolo (doi:. 10 1186 /s12903-015- 0079-6) contiene materiale supplementare, che è disponibile per gli utenti autorizzati.
Sfondo
carie e parodontite sono causati da biofilm batterici, accumulando sulle superfici dentali e dei tessuti molli orali. Poiché la maggior parte dei dispositivi di igiene orale non sufficientemente raggiungere tutti nicchie e angoli nella cavità orale meccanicamente regioni interprossimali sono spesso soggetti al solo le proprietà di dentifricio liquami e delle forze idrodinamiche prodotte durante lo spazzolamento dei denti. Per determinare i massimi effetti idrodinamici, molti studi hanno esaminato l'effetto del dente sonoro e manuale spazzolatura biofilm nonché le differenze all'interno dei vari tipi di spazzolini da denti sonico. A seconda del tipo spazzolini sonici ', da lato a lato spazzolini risultano più spesso superiore a riduzione biofilm al 50%, mentre spazzolini multidimensionali cancella meno biofilm [1-3]. Confrontando diversi spazzolini da denti sonici da lato a lato, tra l'altro mostra differenze significative tra i modelli che vanno 9-80% [4]. Tuttavia, fino ad ora, la maggior parte delle indagini sulla cosiddetta 'rimozione biofilm senza contatto' sono state eseguite non utilizzano dispositivi interprossimali, ma per esempio spazzolini da denti sonico, installati con distanze definite regolate direttamente verso il centro della superficie del disco rivestito biofilm [3-7]. Usando questo approccio, le forze idrodinamiche, formate dai dispositivi orali hanno accesso diretto alla superficie biofilm e colpire, a seconda della distanza, con piena intensità. Anche se descrive un approccio spazzolatura senza contatto, ancora potrebbe differire dalle situazioni effettive interprossimali. Adams et. Al [1] ha studiato l'effetto della rimozione monospecies-biofilm utilizzando un modello di interprossimale con varie distanze dalle punte delle setole. Analizzando le velocità bolla emergenti dei diversi spazzolini sonici, hanno stimato valori di sollecitazione di taglio tra 0,5 e 0,9 Pa, con conseguente riduzione del biofilm fino al 57% per il lato a lato e 16% per spazzolini oscillante-rotante in una distanza di 0 - 5 mm. Frey (2012) hanno sviluppato un dispositivo dente interprossimali con sensore sforzo di taglio integrato e analizzato shear stress a distanze interprossimali di 0,2 mm utilizzando diversi spazzolini da lato a lato [8]. A seconda del tipo di spazzolino e il suo meccanismo di azione, sono stati misurati i valori di sollecitazione di taglio fino a 10 Pa. Tuttavia, i valori di sollecitazione di taglio più pronunciati con rimozione biofilm superiore potrebbero essere valutati da una maggiore flusso del fluido prodotto da sistemi di irrigazione per via orale (ORS). Studi che hanno valutato l'uso di getti d'acqua dentali indicati mediatori pro-infiammatori ridotte, come IL-1ß e PGE
2 e la rimozione della placca salivare biofilm oltre il 99% indipendentemente dalla punta getto d'acqua utilizzata [9-11]. Mentre ORS stati analizzati principalmente negli studi clinici, determinare l'esito sulla riduzione di sanguinamento, gengiviti e placca biofilm, rimozione biofilm interprossimali non era ancora indagato [12, 13].
Perciò, lo scopo di questo studio in vitro, è stato quello studiare l'effetto di un irrigatore orale e uno spazzolino da lato a lato su multispecie rimozione biofilm utilizzando un dispositivo dente interprossimali. Inoltre, i cicli di trattamento utilizzando i ORS o Spazzolino Sonic sono state ripetute ad intervalli di 24 ore per simulare e analizzare l'effetto di ripetere schemi di igiene orale.
Metodi
formazione di biofilm batterici
ceppi sono stati ottenuti dal Institute for Oral Biologia, sezione orale Microbiologia e Immunologia Generale, Università di Zurigo, Zurigo, Svizzera. Prima la formazione di biofilm, i ceppi (Streptococcus mutans
OMZ 918, Streptococcus oralis
OMZ 607, actinomyces naeslundii
OMZ 745) sono state acquisite da precultures striato su Columbia pecore agar sangue piastre (CSBA) (bioMérieux, Marcy l 'Etoile, Francia). Le colonie sono state propagate planctonici in un substrato composto del 30% soluzione di saliva e il 70% modificata mezzo fluido universale (mFUM) [14] separatamente su un bilanciere a 37 ° C in vasi usando gas-paks per creare condizioni anaerobiche (Genbox anaer e GENbag anaer , bioMérieux, Marcy l'Etoile, Francia). Pertanto, la saliva fresco è stato ottenuto da un donatore sano e centrifugato due volte per 30 min da 13400 rpm. A seguito del parere del Comitato Etico del Canton Zurigo, in Svizzera, senza approvazione etica è necessaria per la donazione di saliva come spiegato in precedenza (n. 0324/2013 e n. 50/14). Il pellet è stato rimosso ogni volta e il supernatante residuo fu diluito 1: 2 in cloruro di sodio (NaCl 0,9%) prima della filtrazione sterile (filtri syrenge TPP con 0,2 micron pori, Faust, Schaffhausen, Svizzera). La soluzione risultante è stata saliva utilizzato in tutti sperimentazioni. FUM, un mezzo di brodo basato triptone-lievito consolidata è stata descritta da Loesche et al. [15]. FUM conteneva (per litro di acqua distillata): 10 g di triptone, 5 g di estratto di lievito, 3 g di glucosio, 2 mg di emina, 1 mg di menadione, 0,5 g di cisteina cloridrato, 0,1 g di ditiotreitolo, 2,9 g di 0,9% di NaCl, 0,5 g di Na 2CO 3, 1 g di KNO 3, 0,45 g di K 2HPO 4, 0,45 g di KH 2PO 4, 0,9 g di (NH 4) 2SO 4, e 0,188 g di MgSO 4 * 7h20. Fu modificato completandolo 67 mmol /l tampone di Sørensen ad un pH finale di 7,2. Il glucosio è stato sostituito da 3 g di una miscela 1: 1 di glucosio e saccarosio. La modifica utilizzato in questo studio è stato adottato dai protocolli di biofilm Zurigo [14]. Dopo circa 6 - 7 h soluzioni batterici sono stati adattati alla densità ottica (OD550) di 1 e mescolati in un tubo come inoculo. Per quantificare il inoculi per ml, unità formanti colonie (CFU) sono state seminate su piastre CSBA e incubate in anaerobiosi in vasi usando gas-paks (t = 2 d). Nel frattempo, sterili dischi idrossiapatite sinterizzati (Ø 5 mm Clarkson cromatografia Products, South Williamsport, USA) sono stati incubati in 800 ml di soluzione non stimolata saliva per 4 ha agitazione per formare una pellicola (100 rpm a temperatura ambiente) . Per la formazione di biofilm, dischi pellicle rivestite sono state poi poste in nuove piastre di coltura cellulare di polistirene da 24 pozzetti e incubate con 1 ml di inoculo preparato durante agitazione per 24 ore in vasi a 37 ° C utilizzando gas-paks (Genbox anaer e GENbags anaer, bioMérieux, Marcy l'Etoile, Francia). Media è stata aggiornata tutti i giorni prima di procedure di trattamento e subito dopo il trattamento, trasferendo i campioni in nuove piastre piene di mezzi freschi (30% soluzione di saliva + 70% mFUM). pH è stato controllato ogni giorno nel mezzo di una notte subito dopo il primo cambio multimediale utilizzando un pH-metro (Mettler-Toledo Easy Five, Mettler-Toledo AG, Schwerzenbach, Svizzera)
. Il trattamento
I campioni sono stati divisi in quattro gruppi. Tre esperimenti indipendenti sono stati eseguiti per ottenere n
= 18 esemplari per gruppo (primo esperimento n
= 4, secondo n
= 6, ultimo esperimento n
= 8 campioni per gruppo). Ogni esperimento consisteva di tre giorni di trattamento (d1, d2, d3). Prima di ogni trattamento, misure dell'attività metabolica sono stati eseguiti per ottenere valori basali per ciascun campione. Poi, i campioni sono stati collocati con attenzione in un dispositivo interprossimali con 2 campioni in una distanza di 0,5 mm faccia a faccia (Fig. 1). Il dispositivo di spazzolatura per spazzolini da denti elettrici è stato costruito in una collaborazione tra l'Istituto di dinamica dei fluidi, ETH di Zurigo e il Dipartimento di Odontoiatria preventiva, Parodontologia e Cariologia dell'Università di Zurigo, Svizzera. Per la sperimentazione, 25 ml di acqua di 36 ° C è stato pipettato nel dispositivo a coprire le regioni interdentali e campioni. Per la WF-gruppo, l'irrigatore orale (Waterfloss, Waterpik® Sensonic WP-100E) è stata regolata utilizzando il JT-100E Classic Jet punta ad un angolo di 90 ° verso la regione interprossimale come descritto nelle informazioni del produttore. Il controllo della pressione è stato posizionato a livello 10 (alta pressione dell'acqua) e attivato per 10 s. Successivamente, i campioni sono stati accuratamente prelevati dal dispositivo interprossimale e ripristinati in piastre con 0,9% NaCl. Per la protezione WPA-gruppo, lo spazzolino da denti sonico (Waterpik® Sensonic SR-3000E) è stato regolato sul dispositivo utilizzando la rispettiva testina di serie con un carico della testina sulla regione interprossimale di & lt; 0,9 N misurata per spazzolini da denti sonici (carico totale di 70 ± 5 g) [2, 16]. La spazzolatura è stata eseguita per 10 s in condizioni statiche. Per i campioni del WPi-gruppo, le procedure sono state ripetute per le spazzole inattivati (Power Off). I campioni senza trattamento sono stati utilizzati come gruppo di controllo (CO). Figura. 1 Una bozza del dispositivo tenendo utilizzato con un carico regolabile (*); posto del campione Interprossimale entro la camera (freccia). dispositivi orali possono essere posizionati perpendicolarmente ai modelli su ossessioni, come illustrato in b) per lo spazzolino da denti sonico e c) per l'irrigatore orale
test alamarBlue e unità formanti colonia
Prima di sperimentazione, il test è stato validato in alamarBlue preliminare test [vedere sui file 1]. L'inoculo sopra descritto è stato diluito 1: 2 in tampone fosfato in sette serie. Campioni di ogni serie di diluizioni sono state determinate le unità formanti colonie, conseguente serie di diluizione 5.5 al 350 × 10 6 CFU /ml. Dieci campioni di ogni serie sono stati poi utilizzati per misurazioni cinetiche. Pertanto, i campioni sono stati incubati in pozzetti contenenti 10 vol.% AlamarBlue cellulare vitalità Assay Reagent (tecnologie della vita, Zug, Svizzera) e misurata allo spettrofotometro con piastra-reader a 560 nm di eccitazione /585 nm di emissione a 37 ° C (Spectramax M2, Molecular Devices, Bucher Biotec, Basilea, Svizzera). Le misurazioni sono state eseguite ogni 15 min per 2 h. Le unità di fluorescenza relativa misurata di ciascuna diluizione sono stati tracciati contro il tempo di incubazione. I risultati di questi test preliminari hanno mostrato tassi iniziali costanti della reazione enzimatica in un intervallo di circa il 30% della conversione substrato totale per ogni curva di diluizione [vedi sui file 1]. Per ottenere misurazioni all'interno della gamma di aumento lineare per le sperimentazioni in corso, il tempo di incubazione nella soluzione alamarBlue è stato fissato a 15 min. Compra di sperimentazione, i dischi di idrossiapatite rivestiti biofilm sono stati memorizzati in una nuova piastra bene con 0.9% NaCl a evitare ulteriori crescente durante il trattamento. Poi, i campioni sono stati trasferiti accuratamente in piastre da 96 pozzetti e incubati in 300 microlitri soluzione alamarBlue contenente mezzi freschi (30% soluzione di saliva + 70% mFUM) con 10 vol.% AlamarBlue in condizioni anaerobiche. Inoltre, due pozzi sono stati riempiti con una soluzione in bianco alamarBlue (senza esemplari) e un pozzetto era pieno di batteri centrifugati dal inoculi planctonici in soluzione alamarBlue per ottenere i valori per l'attività metabolica massima. Dopo 15 minuti, 200 ml di ogni soluzione è stata alamarBlue pipettati in nuove piastre da 96 pozzetti e l'attività metabolica è stata misurata in uno spettrofotometro con piastra-reader a 560 nm di eccitazione /585 nm di emissione. Le unità di fluorescenza relativi risultanti (RFU) sono stati definiti come valori basali o pretrattamento RFU. Dopo le misurazioni, i campioni sono stati conservati in 0,9% NaCl e ulteriori esperimenti sono stati condotti (trattamenti con i diversi dispositivi orali). Poi, i valori post-trattamento sono stati ottenuti utilizzando il saggio alamarBlue come descritto in precedenza. Dopo RFU-misurazioni, i campioni sono stati trasferiti al substrato fresco per consentire la ricrescita e si ritirarono con le procedure identiche di 24 ore più tardi. Pertanto, i campioni sono stati distribuiti negli stessi gruppi. Complessivamente, ogni campione sono stati sottoposti a tre cicli di trattamento (D1, D2, D3).
Dopo l'ultimo trattamento e la misurazione utilizzando alamarBlue (D3), tre esemplari di ogni gruppo sono stati analizzati ulteriormente usando CFU. Pertanto, i campioni sono stati in agitazione in 1 ml di NaCl allo 0,9% per 2 min e sonified per 5 s. Ogni sospensione batterica è stato diluito in 0,9% di NaCl e placcato su agar sangue di Columbia pecore (CSBA) piastre (bioMérieux, Marcy l'Etoile, Francia). piastre CSBA sono stati poi incubati in vasetti a 37 ° C, utilizzando -paks gas (GENbag anaer, bioMérieux, Marcy l'Etoile, France) per 2 giorni.
microscopio elettronico a scansione analisi
Per SEM, due campioni per gruppo (n = 8
) sono stati utilizzati dopo l'ultimo ciclo di trattamento (D3). I campioni sono stati lavati con soluzione allo 0,9% di NaCl e fissati in soluzione di glutaraldeide 4% (in 0.1 M tampone sodio fosfato di potassio, pH 7,0) per almeno 24 h. La disidratazione è stata ottenuta gradualmente (2 × 15 min in etanolo al 50% vol., 2 × 15 min in etanolo al 70% vol., 2 × 15 min in etanolo 80% vol., 2 × 15 min in etanolo 90%, 3 × 20 min in etanolo 96% e 2 × 60 min in etanolo assoluto). Prima di oro polverizzazione rivestire l'essiccazione punto critico è stato eseguito. I campioni di tutti i gruppi sono stati esaminati dopo l'ultima fase di trattamento periodicamente ripetuta (D3). Inoltre sono state scattate le immagini di campioni senza batteri. Ingrandimenti 45x sono stati portati immagine superfici dei campioni e 500x per mostrare caratteristiche più dettagliate superficiali.
Analisi statistica
attività metabolica è stata analizzata per ciascun disco separatamente e il rapporto di post-trattamento per valori basali sono stati confrontati ai giorni di trattamento (d1, d2, d3). L'analisi dei dati è stata effettuata utilizzando ANOVA con il test post-hoc Scheffe, o Kruskal-Wallis con il post-hoc test di Mann-Whitney.
Risultati
mediano basale RFU-valori di D1 (tutti i gruppi) hanno portato a 7.821,8 (range interquartile = 5114,5) RFU. RFU-valori basali di d2 (pretrattamento RFU) ha mostrato una maggiore attività metabolica di d1, indipendentemente dal gruppo di trattamento (media ± SD, WF: 12045 ± 4414, WPA: 11832 ± 4331, WPi: 10600 ± 3362, CO: 10508 ± 3153). Baseline RFU-valori di d3 rivelato una ridotta attività metabolica rispetto a D1 e D2 (media ± SD, WF: 5864 ± 3974, WPA: 6768 ± 3753, WPi: 6531 ± 4490, CO: 6878 ± 4093; Tabella 1). RFU valori post-trattamento hanno riguardato RFU-valori di base per calcolare l'attività metabolica residua in percentuale. Significativamente più alta riduzione dell'attività metabolica in relazione ai valori basali è stato mostrato per la WF-gruppo (irrigatore orale) per 10 s per tutti i cicli di trattamento (D1: 17,9%, D2: 36,8% e D3: 17.2%). Il WPA-gruppo (spazzolino da denti sonico attivo) ha mostrato ridotto significativamente l'attività metabolica in d1, mentre nessuna riduzione significativa è stata misurata sul ciclo di trattamento D2 e D3 (d1: 58,8%, d2: 85,2%, d3: 79,6%). I campioni trattati con gli inattivi spazzolino sonico (WPI) ed esemplari non trattati (CO) non ha mostrato alcuna significativa riduzione dell'attività del biofilm a tutti (d1: WPi 82,5%, CO 89,6%; d2: WPi 82,5%, CO 90,0%; d3: WPi 96.3 %, CO 116,3%; Fig. 2). Elettronico a scansione immagini microscopiche del WF-gruppo ha rivelato superfici quasi priva di biofilm con batteri residui e matrice parzialmente spogliato-off sulle aree esterne (Fig. 3 a e b). Le immagini della WPA, WPi- e CO-gruppo hanno mostrato enormi quantità di biofilm con punte di isole batteriche e aggregati (Fig. 3). dati mediani CFU portato a 1.0 × 10 ^ 6 (WF), 2.2 × 10 ^ 9 (WPA), 1.1 × 10 ^ 11 (WPI) e 1,8 × 10 ^ 11 (CO). Due esemplari della CO-gruppo erano innumerevoli (& gt; 10 ^ 11; Fig. 4) .table 1 Media ± SD di pre e post-trattamento in unità di fluorescenza relativa [RFU] per i diversi dispositivi in momenti D1-D3
trattamento giorni
Gruppi
pre-trattamento [RFU] media ± SD
post-trattamento [RFU] media ± SD
d1
WF
7077 ±
2564
1498 ±
1484
WPA
7384 ±
2434
4715 ±
2841
WPi
6832 ±
3202
5944 ±
3244
CO
6669 ±
3157
5930 ±
2845
d2
WF
12045 ±
4414
4540 ±
2451
WPA
11832 ±
4331
9966 ±
3414
WPi
10600 ±
3362
8953 ±
3788
CO
10508 ±
3153
9609 ±
3564
d3
WF
5864 ±
3974
885 ±
564
WPA
6768 ±
3753
4627 ±
2087
WPi
6531 ±
4490
4757 ±
1832
CO
6878 ±
4093
5979 ±
2318
WF
irrigatore orale, WPA
spazzolino sonic attiva, WPi
sonora inattivo spazzolino da denti, CO
controllo
Fig. 2 boxplot di attività residua metabolica in% di RFU valori basali di diverse condizioni sperimentali con mediana (linea orizzontale interna), 1 ° e 3 ° quartile (inferiore e la linea scatola superiore) e 10 ° e 90 ° percentile (baffi). WF = irrigatore orale; WPA = spazzolino sonico, attiva; WPi = spazzolino sonico, inattiva; CO = controllo. Differenze significative sono illustrate sopra grafici a scatole corrispondente
Fig. 3 immagini SEM di tutti i gruppi dopo l'ultimo trattamento (D3). I campioni dopo il trattamento con la WF irrigatore orale (a, b), lo spazzolino sonico attiva WPA (c, d), gli inattivi spazzolino sonico WPi (e, f), il gruppo di controllo CO senza trattamento (g, h) ei campioni senza batteri (i, j). Le aree con tosata-off biofilm sono mostrati in a) e b). Ingrandimenti di 45x (A, C, G, E, I, scala bar = 100 micron) e 500x (b, d, f, h, j, scala bar = 10 micron) sono stati utilizzati
Fig. 4 boxplot di batteri residui dopo d3 in LN CFU /ml (n =
3 per gruppo). Due esemplari della CO-gruppo ha rivelato piastre innumerevoli (& gt; 10 ^ 11). La mediana CFU (linea orizzontale interna) ha comportato 1.0 × 10 ^ 6 (WF), 2.2 × 10 ^ 9 (WPA), 1.1 × 10 ^ 11 (WPI) e 1,8 × 10 ^ 11 (CO). WF = irrigatore orale; WPA = spazzolino sonico, attiva; WPi = spazzolino sonico, inattiva; CO = Controllo
Discussione
basso attività metabolica residua di biofilm interprossimali su D1, D2 e D3 è stata ottenuta utilizzando l'irrigatore orale. Significativa riduzione dell'attività è stato mostrato anche dopo trattamenti d1 con lo spazzolino da denti sonico attiva. dati CFU dei campioni dopo il trattamento sulla d3 specchio stesse graduazioni tra i gruppi. Tuttavia, l'analisi dei modelli di trattamento intervallari (D1-D3) ha evidenziato, indipendente dalle diverse procedure di trattamento, l'elevato tasso di ricrescita su ogni provetta dopo 24 h. Considerando solo l'attività metabolica dei diversi gruppi dopo 24 h (linea di base d2 o d3, Tabella 1), non sembrano differenze affatto. la riduzione del biofilm di oltre 63-83% con una prova orale risultati irrigatore a stessa attività biofilm come nel gruppo di controllo (CO), con nessun trattamento, dopo 24 ore. Tuttavia, questo studio principalmente indagato l'attività metabolica del biofilm. Le differenze di patogenicità di biofilm trattati o non trattati non sono state analizzate. Inoltre, i risultati del trattamento intervallare stati mostrati solo per un periodo di tre giorni. Il biofilm ricrescita e resistenza al trattamento possono cambiare dopo periodi più lunghi di pulizia.
Il tempo di applicazione del irrigatore orale è stato fissato a 10 s. Ancora, attività residua in una gamma di 17-37% è stata misurata. Per quanto riguarda le immagini SEM con l'irrigatore orale, sono mostrati regioni matrice tosati-off e le aree residuali biofilm nelle regioni a disco esterne. Ciò può essere spiegato dal centro idrogetto dell'irrigatore orale, che sembra essere molto definita e non colpisce l'intera superficie dei dischi biofilm rivestite nella stessa misura. regioni marginali del disco, che non erano in contatto diretto con il getto d'acqua può risultare in una maggiore quantità di batteri residui dovuti alla forza di taglio inferiore. Inoltre, l'uso di biofilm lotti porta ad aderenza batterica su tutte le superfici del disco. I lati dei dischi non sono stati raggiunti da dispositivi orali e possono ospitare batteri residui. L'irrigatore orale è stata applicata perpendicolarmente allo spazio interprossimali, portando ad un getto tangenziale alla superficie biofilm. batteri singole sui lati dei campioni siano rimasti greggia, tuttavia, la loro influenza sembra piuttosto trascurabile a causa della loro quantità minore. attività Biofilm di 59 - 85% rimaste dopo la pulizia con lo spazzolino sonico per 10 s senza contatto. Studi precedenti hanno riportato rimozione biofilm senza contatto di oltre il 50% da lato a lato spazzolini [1, 2, 17-19]. La maggior parte di questi studi sono stati analizzati al microscopio dopo colorazione utilizzando un microscopio confocale a scansione laser. aree selezionate delle superfici trattate sono stati scansionati e volumi biofilm restanti sono stati calcolati e impostati in relazione ai gruppi di controllo. In contrasto con la metodologia utilizzata nel presente studio, superfici trattate solo erano inclusi per l'analisi. Tuttavia, questi studi non riescono a confrontare ciascun campione separatamente prima e dopo ogni trattamento. Analisi microscopica fornisce solo una visione per i campioni dopo il trattamento, a causa di procedure di colorazione irreversibili. L'uso di alamarBlue permette misure ripetibili. Ogni campione possono essere analizzati a tempi diversi e effetti dei trattamenti intervallari possono essere osservate usando i campioni identici. La sua domanda di biofilm la quantificazione è stata valutata in diversi studi prima [20, 21]. È stato convalidato anche per il biofilm tre specie utilizzate per gli esperimenti (vedi file complementare 1). Poiché la maggior parte
indagini sulla cosiddetta 'rimozione biofilm senza contatto' sono state eseguite da dispositivi orali posizionate direttamente verso il centro della biofilm ricoperto le superfici del disco invece di usare dispositivi interprossimali, e causa della elevata varietà di tempo di applicazione, la distanza del provino superfici e modelli di biofilm utilizzato, i confronti tra singoli studi devono essere effettuati solo con molta attenzione.
differenze tra i modelli biofilm può anche essere osservato con riferimento al materiale di superficie utilizzato come substrato. sezioni smalto umani sono spesso sostituite da titanio [4], di vetro [1, 3, 6, 17] o dischi idrossiapatite [2, 14, 18]. Il presente studio è stato eseguito con dischi di idrossiapatite come riferimento lo smalto dei denti per evitare possibili disomogenei modelli adesione batterica lungo fessure dello smalto e fessure.
Quanto riguarda il miglior rendimento del irrigatore orale rispetto al attivato uno spazzolino sonico deve tener mente che in entrambi i casi dentifricio era coinvolta, pur utilizzando uno spazzolino questo è raramente il caso. L'uso aggiuntivo di dentifricio insieme con lo spazzolino sonico attivata può avere portare ad ulteriore rimozione del biofilm causa di un effetto meccanico di particelle dal dentifricio, e anche a causa di ulteriori ingredienti es tensioattivi. Pertanto, per ulteriori studi dovrebbe essere studiata l'influenza supplementare di dentifricio, pure. Tuttavia, era intenzione di questo studio per valutare l'influenza specifica dei dispositivi senza interferenze da altri fattori. Per ulteriori ricerche, l'effetto di procedure di pulizia intervallare più aiuterebbe comprendere l'effetto a lungo termine del modello diverso igiene orale sul biofilm interprossimali. Il confronto dei senza contatto spazzolatura da dispositivi interprossimali e senza contatto spazzolatura dai dispositivi orali posizionati direttamente verso il biofilm avrebbe facilitare il confronto tra i diversi modelli di studio.
Conclusioni
Sulla base dei risultati, la pulizia delle regioni interprossimali da idrodinamica flusso di un irrigatore orale può ottenere la rimozione più efficace di interprossimale biofilm rispetto a spazzolini da denti sonici
Abbreviazioni
CFU:.
unità formanti colonie
CO:
controllo campioni (campioni di biofilm rivestite senza trattamento)
d1:
primo giorno di trattamento
d2:
secondo giorno di trattamento
d3:
Terzo giorno di trattamento
mFUM:
modificato fluido
mezzo universale
NaCl:
cloruro di sodio
ORS:
sistemi di irrigazione orale
RFU:
unità di fluorescenza relativa
SEM:
microscopio elettronico a scansione
WF:
Waterpik® Sensonic WP-100E: irrigatore orale
WPA:
Waterpik® Sensonic SR-3000E: spazzolino da denti sonico, attiva
WPi:
Waterpik® Sensonic SR-3000E: spazzolino da denti sonico, inattivo
dichiarazioni
Riconoscimento
Gli autori desiderano ringraziare Beatrice Sener della Clinica di Odontoiatria preventiva, Parodontologia e Cariologia per il suo grande sostegno con il SEM
di Open Access Questo articolo è distribuito sotto i termini della creative Commons Attribution License. (http: //. creativecommons org /licenze /da /4. 0), che permette l'uso senza restrizioni, la distribuzione , e la riproduzione con qualsiasi mezzo, a condizione che l'opera originale sia correttamente accreditato. La rinuncia Creative Commons Public Domain Dedication (http: //creativecommons org /pubblico dominio /zero /1. 0 /.) Vale anche per i dati messi a disposizione in questo articolo, se non indicato diversamente
aggiuntive. presentare
sui file 1: convalida del test alamarBlue. (DOCX 194 KB) Competere interessi
Gli autori dichiarano di non avere interessi in gioco.
Contributi degli autori
Dr. Tawakoli concepito questa ricerca ed è stato il ricercatore principale di questo studio. La signora Sauer e il signor Becker ha aiutato con le prestazioni dello studio e con questioni metodologiche. Dr. Buchalla e il Dr. Attin supervisionato lo studio e criticamente rivisti il manoscritto. Tutti gli autori hanno letto e approvato il manoscritto finale.
